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蛋白質含量測定方法一般來說，有以下五種：凱氏定氮法，雙縮尿法（Biuret法）、Folin－酚試劑法（Lowry法）、紫外吸收法和考馬斯亮藍法（Bradford法）。
表五種蛋白質含量測定方法的比較
| 方法 | 靈敏度 | 時間 | 原理 | 干擾物質 | 說明 |
| 凱氏定氮法 （Kjedahl法） | 靈敏度低，適用于0.2~ 1.0mg氮，誤差為 ±2％ | 費時 8～10小時 | 將蛋白氮轉化為氨，用酸吸收后滴定 | 非蛋白氮（可用三氯乙酸沉淀蛋白質而分離） | 用于標準蛋白質含量的準確測定；干擾少；費時太長 |
| 雙縮脲法（Biuret法） | 靈敏度低 1～20mg | 中速 20~30分鐘 | 多肽鍵＋堿性Cu2＋®紫色絡合物 | 硫酸銨； Tris緩沖液； 某些氨基酸 | 用于快速測定，但不太靈敏；不同蛋白質顯色相似 |
| 紫外吸收法 | 較為靈敏 50～100mg | 快速 5～10分鐘 | 蛋白質中的酪氨酸和色氨酸殘基在280nm處的光吸收 | 各種嘌吟和嘧啶； 各種核苷酸 | 用于層析柱流出液的檢測；核酸的吸收可以校正 |
| Folin－酚試劑法（Lowry法） | 靈敏度高 ～5mg | 慢速 40～60 分鐘 | 雙縮脲反應；磷鉬酸－磷鎢酸試劑被Tyr和Phe還原 | 硫酸銨； Tris緩沖液； 甘氨酸； 各種硫醇 | 耗費時間長；操作要嚴格計時； 顏色深淺隨不同蛋白質變化 |
| 考馬斯亮藍法（Bradford法） | 靈敏度zui高 1～5mg | 快速 5～15分鐘 | 考馬斯亮藍染料與蛋白質結合時，其lmax由465nm變為595nm | 強堿性緩沖液； TritonX-100; SDS | 的方法； 干擾物質少； 顏色穩定； 顏色深淺隨不同蛋白質變化 |
從以上表格中可以得出，不同的方法有不同的特點和優勢，如紫外吸收法測定時間快。但是綜合起來，zui后一種考馬斯亮藍法（Bradford法）效率zui高，無論是測定時間，靈敏度還是受干擾程度，都是比較占優勢的。
下面，我們來重點介紹一下其中一種蛋白質含量測定方法--凱氏定氮法。
凱氏定氮法（Kjedahl法）
首先將濃硫酸倒入樣品中，邊倒邊搖晃，以使濃硫酸與樣品充分接觸，然后加熱試劑。如果你需要加快實驗進度，可以加入CuSO4作催化劑，這樣，實驗的反應時間就會大大縮短。CH2COOH和H2SO4反應生成氨氣，然后氨氣又與H2SO4發生作用，固定了氮元素。這時我們得到了（NH4）2SO4的溶液，然后我們可以用NaOH去跟硫酸銨反應，通過計算NaOH的使用量，就可以計算出氮的含量。下面是整個定氮法中發生的化學反應。
CH2COOH+ 3H2SO4 = 2CO2 + 3SO2 +4H2O +NH3 （1）
2NH3 + H2SO4= （NH4）2SO4 （2）
（NH4）2SO4 + 2NaOH =2H2O +Na2SO4 + 2NH3 （3）
當我們得到氮的含量以后，我們就可以通過一定的計算，zui終算出蛋白質的含量。
凱氏定氮法常用于有機化合物中的氮含量的測定，是蛋白質含量測定的經典方法，雖然在測試過程中，試劑用量很大，但是，不可否認，它所適用的樣品范圍之廣，測試結果之，都是*的。
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